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TSZelisa試劑盒*化的包被條件

時間:2017-6-21閱讀:211
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1.TSZelisa試劑盒包被抗原的選擇 
包被抗原可分為天然蛋白、重組蛋白和小分子抗原三大類。天然蛋白需經純化才能用直接吸附法包被,對于含雜質較多的抗原可以采 用間接捕獲法包被(先用能夠與目的抗原反應的物質如抗體直接吸附在酶標板上,再通過特異性反應使抗原固相化)。經純化的重組蛋白一般皆可直接包板。小分子 抗原比如多肽以及一些小分子有機化合物,由于分子量太小,往往難于直接吸附在酶標板上,一般都先使其與無關蛋白質如BSA等偶聯,偶聯物吸附于固相載體上。  
2.包被液的選擇 
一般常用的是pH9.6的碳酸鹽緩沖液,如果包被的抗原在堿性條件下不穩定的話,TSZelisa試劑盒也可以使用pH7.2的磷酸 鹽緩沖液。 
3.包被溫度的選擇 
通常是4-8度條件下過夜或者37度保溫2小時,建議4-8度條件下包被,有利于蛋白活性的保持。  
4.包被濃度的選擇 
包被的適濃度隨固相載體和包被物的性質變化,一般蛋白質的包被濃度為1-5ug/ml,要明確針對特定包 被抗原的適包被濃度需要通過實驗來確定。  
包板后需要封閉嗎?應該選擇什么樣的封閉體系?  
封閉是否必要,取決于TSZelisa試劑盒的模式及具體的實驗條件。一般說來,雙抗體夾心法,只要酶標記物是高活性的,操作時洗滌*,不經封閉也可得到滿意的結果。而在間接法測定中,封閉一般是*的。

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